Werkwijze voor het maken van microscoopglaasjes
Er zijn drie methoden om microscoopglaasjes te maken:
1. Uitstrijkmethode
Uitstrijkmethode is een bereidingswijze waarbij het materiaal gelijkmatig over het glaasje wordt verdeeld.
Uitstrijkmaterialen omvatten eencellige organismen, kleine algen, bloed, bacterieculturen, losse weefsels van planten en dieren, spermanesten, helmknoppen, enz.
Er moet aandacht worden besteed aan het smeren:
(1) De glijbaan moet schoon zijn.
(2) De glijbaan moet plat worden gehouden.
3) De coating moet uniform zijn. Breng het druppeltje coatingvloeistof rechts van het midden van het objectglaasje aan en verdeel het goed met het lemmet van een ontleedmes of een tandenstoker, enz.
4) De coating moet dun zijn. Gebruik een ander objectglaasje als duwer, duw voorzichtig van rechts naar links langs het oppervlak van het objectglaasje met de druppel applicatieoplossing (de hoek tussen de twee objectglaasjes moet 30 graden tot 45 graden zijn) en breng een gelijkmatig dunne laag aan.
5) Fixatie. Als fixatie nodig is, gebruik dan chemische fixatie of uitdroging (bacteriële) fixatie.
6) Verkleuring. Gebruik methyleenblauw voor bacteriën en Rachels vlek voor bloed. De kleuroplossing moet het gehele gecoate oppervlak bedekken.
7) Spoelen. Op absorberend papier absorberen of droog bakken.
8) Sluit de folie af. Gebruik voor langdurige opslag Canadese boomfolie.
2. Filmpersmethode
Bij de drukfilmmethode wordt biologisch materiaal tussen het glaasje en het afdekblad geplaatst, waarbij een bepaalde druk wordt uitgeoefend, worden de weefselcellen uit elkaar gedrukt als voorbereidingsmethode.
(1) materiaal meenemen. Observatie van celdeling, celdeling moet uitbundige, verse weefselcellen als materiaal worden geselecteerd. Zoals wortelpunten, meristeemweefsel van de stengelpunt, beenmergcellen, helmknoppen (pollenmoedercellen). Spermanest (spermatogonia) enzovoort.
(2) Fixatie. Materiaalfixatie kan naar behoefte worden bepaald, onmiddellijk na het nemen van de observatie van de materiaaldrukfilm, kan geen afzonderlijke vaste behandeling worden uitgevoerd (en synchroon kleuren); Neem het materiaal niet direct na de inspectie mee, het materiaal kan worden gefixeerd met een fixeermiddel (doorgaans met alcoholacetaatfixeermiddel). Vast 2 ~ 24 uur (afhankelijk van het materiaal) na wassen met 95% ethanol, bewaard in 70% ethanol, stand-by.
(3) Dissociatie. De cellen zijn niet gemakkelijk om het materiaal te dispergeren met een hydrolyse-scheidingsoplossing (zoals 1N HCl of zoutzuur en een alcoholoplossing), algemene behandeling 6 ~ 20 minuten, na dissociatie en spoelen met water vóór kleuring.
(4) Kleuring. Er zijn veel soorten vlekken. Observatie van chromosomen wordt vaak gebruikt om te kleuren met magenta-acetaatkleuringsoplossing.
(5) Filmpersen. Plaats het materiaal op een glaasje, voeg een druppel water of kleuroplossing toe, bedek het dekglaasje en druk voorzichtig met uw duim op het glaasje.
(6) Observatie. Na het persen van de film kan deze onder de microscoop worden bekeken.
