De bereidingswijze van microscoopglaasjes
1. Uitstrijkmethode
De smeermethode is een methode voor het voorbereiden van objectglaasjes door er gelijkmatig materialen op te coaten.
Uitstrijkmateriaal omvat een-cellige organismen, kleine algen, bloed, bacteriële kweekmedia, losse weefsels van dieren en planten, teelballen, helmknoppen, enz.
Bij het uitsmeren moet aandacht worden besteed aan:
(1) Het glasplaatje moet worden gereinigd.
(2) Het glasplaatje moet vlak zijn.
(3) De coating moet uniform zijn. Breng de druppel rechts in het midden van het glasplaatje aan en verdeel deze gelijkmatig met een ontleedmes of tandenstoker.
(4) De coating moet dun zijn. Gebruik een ander glaasje als glaasje, duw voorzichtig van rechts naar links langs het oppervlak van het glaasje met de aangebrachte vloeistof (de hoek tussen de twee glaasjes moet 30 graden tot 45 graden zijn) en breng een uniforme dunne laag aan.
(5) Vast. Als fixatie nodig is, kunnen voor fixatie chemische fixeermiddelen of droogmethoden (bacteriën) worden gebruikt.
(6) Verkleuring. Bacteriën gebruiken methyleenblauw en bloed gebruikt Wright-kleuringsoplossing. De kleuroplossing moet het gehele coatingoppervlak bedekken.
(7) Spoelen. Gebruik absorberend papier om te absorberen of te drogen.
(8) Sluit de film af. Conservering op lange termijn met behulp van Canadese boomfilm.
2. Tabletpersmethode
De compressiemethode is een methode waarbij biologische materialen in plakjes worden gesneden door ze tussen een glasplaatje en een deksel te plaatsen, waarbij een bepaalde druk wordt uitgeoefend om weefselcellen te verspreiden.
Het algemene proces van tabletpersmethode:
(1) Materiaalkeuze. Om de celdeling waar te nemen, moeten verse weefselcellen met krachtige celdeling als materiaal worden geselecteerd. Zoals wortelpunt, stengelpuntmeristeem, beenmergcellen, helmknoppen (pollenmoedercellen). Spermanesten (spermatocyten), enz.
(2) Vast. De materiaalfixatie kan naar behoefte worden bepaald en het monster moet onmiddellijk worden samengedrukt en geobserveerd. Het is niet nodig om een aparte fixatiebehandeling (synchroon met kleuring) uit te voeren; Als het materiaal niet onmiddellijk na monstername wordt geïnspecteerd, kan het worden gefixeerd met een fixeermiddel (meestal azijnzuuralcoholfixeermiddel). Na 2-24 uur fixeren (afhankelijk van het materiaal), afspoelen met 95% ethanol en bewaren in 70% ethanol voor later gebruik.
(3) Scheiding. Materialen die niet gemakkelijk door cellen worden verspreid, moeten gedurende 6-20 minuten worden behandeld met een hydrolyse-scheidingsoplossing (zoals 1N HCl of zoutzuursperma). Na dissociatie moeten ze vóór het kleuren met water worden gespoeld.
(4) Kleuring. Er zijn veel soorten kleurstoffen. Chromosomen worden gewoonlijk gekleurd met magenta-azijnzuurkleuringsoplossing.
(5) Druk op de tablet. Plaats het materiaal op een objectglaasje, voeg een druppel water of kleurstofoplossing toe, bedek het objectglaasje met een deksel en druk er voorzichtig met uw duim op.
(6) Observeer. Na compressie kan het onder een microscoop worden waargenomen.
